? 如何解凍血清才不會使產品質量受損?
將血清從冷凍箱取出后，推薦將其置于室溫下使之*融解。必須注意的是，融解過程中必須不時地搖晃均勻，血清融解后不可在室溫下放置過長時間。
? 血清中包含絮狀沉淀，它們是什么，怎么處理？ 沉淀包含纖維蛋白和脂蛋白。這是正常特性，不會影響產品性質。要除去沉淀，離心血清（400g，1-2分鐘）或者簡單的讓其沉淀在瓶子底部，將血清小心的轉移到另一個無菌瓶里（一般不建議采用過濾的方法除去沉淀，因為沉淀會堵塞濾膜而無法過濾）。大多情況輕輕搖動沉淀并加熱至37℃就會再溶解。所以，使用產品時要搖動并加熱血清至37℃，沉淀會自然消失。
? 如何避免血清中產生沉淀？
按如下操作可避免沉淀的產生：
1. 解凍血清時，請隨時將之搖晃均勻，使溫度及成分均一，減少沉淀的發生。
2. 血清分裝凍存時，須規則搖晃均勻（小心勿造成氣泡），使溫度與成分均一。
3. 勿直接由-20℃直接至37℃解凍，因溫度改變太大，容易造成蛋白質凝結而發生沉淀。
4. 勿將血清置于37℃太久，否則血清會變得渾濁，同時血清中許多較不穩定的成份也會因此受到破壞，從而影響血清的品質。
5. 血清的熱滅活非常容易造成沉淀物的增多，若非必要，可以無須做此步驟。
6. 若必須做血清的熱滅活，請遵守56℃，30分鐘的原則，并且隨時搖晃均勻。溫度過高，時間過久或搖晃不均勻，都會造成沉淀物的增多。
? 培養基中添加了血清和抗生素后，可長期保存嗎？
一旦您在新鮮培養基中添加了血清和抗生素時，您應該在兩到三周內使用它。因為一些抗生素和血清中的基本成分在解凍后就開始降解。
? 保存血清的方法?
我們建議血清應保存在-2O℃。若存放于4℃時，請勿超過一個月。若一次無法用完一瓶，建議無菌分裝血清至恰當的滅菌容器內，再放回冷凍。
? 為什么要熱滅活血清?
加熱可以滅活補體系統。激活的補體參與溶解細胞事件，刺激平滑肌收縮，細胞和血小板釋放組
胺，激活淋巴細胞和巨噬細胞。在免疫學研究，培養ES 細胞、平滑肌細胞時，推薦使用熱滅活血清。
? 有必要做熱滅活嗎?
實驗顯示，經過正確處理的熱滅活血清，對大多數的細胞而言是不需要的。經此處理過的血清對
細胞的生長只有微小的促進，或*沒有任何作用，甚至通常因為高溫處理影響了血清的質量，而造
成細胞生長速率的降低。而經過熱處理的血清，沉淀物的形成會顯著的增多，這些沉淀物在倒置顯微
鏡下觀察，像是“小黑點”，常常會讓研究者誤以為是血清遭受污染，而把血清放在37℃環境中，又
會使此沉淀物更增多，使研究者誤認為是微生物的分裂擴增。
若非必須，可以不需要做熱處理這一步。不但節省時間，更確保血清的質量!
? 細胞培養中出現黑點是污染嗎？如何處理？
一旦您在細胞培養的過程中發現有黑點生成，首先，要肉眼觀察培養基是否混濁，然后，在鏡下
觀察培養細胞生長的狀態，黑點是否游動。如果細胞被污染，微生物則會大量繁殖，培養基就會迅速
變黃、變混濁。污染包括細菌污染、支原體污染等。
如果在鏡下觀察細胞，生長狀態良好，與黑點出現前相比，沒有任何變化，那么，黑點的出現可
能與以下幾種情況有關：
（1）細胞生長過老，破碎的細胞殘骸；
（2）血清質量不好，反復凍融的結果；
（3）配制培養基的pH 值偏高，不宜細胞生長；
（4）配制培養基的水質、容器不合格。可應用離心、過濾的方法去除這些黑點；
（5）培養原代細胞中出現小黑點，可能是原代組織中的雜質，多次傳代可以消除。
? 細胞培養中如何防止黑點生成？
（1） 盡可能地減少血清凍融次數。
（2） 培養基無需37℃水浴。
（3） 培養基保持*PH 值7.0- 7.2。
（4） 嚴格控制配制培養基的水質，容器定期刷洗。